El analizador de reología sanguínea automatizado SA-6900 adopta un modo de medición de tipo cono/placa.El producto impone una tensión controlada sobre el fluido a medir a través de un motor de bajo par de inercia.El eje motor se mantiene en posición central mediante un cojinete de levitación magnética de baja resistencia, que transfiere la tensión impuesta al fluido a medir y cuyo cabezal de medición es de tipo cono-placa.Toda la medición es controlada automáticamente por el ordenador.La velocidad de corte se puede establecer aleatoriamente en el rango de (1~200) s-1 y puede trazar una curva bidimensional para la velocidad de corte y la viscosidad en tiempo real.El principio de medición se basa en el teorema de la viscosidad de Newton.
Modelo | SA-6900 |
Principio | Sangre total: método de rotación; |
Plasma: método de rotación, método capilar | |
Método | Método de placa cónica, |
método capilar | |
Recopilación de señales | Método de placa cónica: tecnología de subdivisión ráster de alta precisión. Método capilar: tecnología de captura diferencial con función de seguimiento automático de fluidos. |
Modo de trabajo | Las sondas duales, las placas duales y las metodologías duales funcionan simultáneamente |
Función | / |
Exactitud | ≤±1% |
CV | CV≤1% |
Tiempo de prueba | Sangre entera≤30 seg/T, |
plasma≤0.5seg/T | |
tasa de corte | (1~200)s-1 |
Viscosidad | (0~60) mPa.s |
Esfuerzo cortante | (0-12000) mPa |
Volumen de muestreo | Sangre total: 200-800ul ajustable, plasma≤200ul |
Mecanismo | Aleación de titanio, cojinete de joyas. |
Posición de muestra | 90 posiciones de muestra con un solo rack |
canal de prueba | 2 |
Sistema liquido | Bomba peristáltica de doble compresión, sonda con sensor de líquido y función de separación automática de plasma |
Interfaz | RS-232/485/USB |
Temperatura | 37 ℃ ± 0,1 ℃ |
Control | Gráfico de control LJ con función de guardar, consultar e imprimir; |
Control de fluido original no newtoniano con certificación SFDA. | |
Calibración | Fluido newtoniano calibrado por líquido de viscosidad primaria nacional; |
El fluido no newtoniano obtiene la certificación de marcador estándar nacional otorgada por AQSIQ de China. | |
Informe | Abierto |
1. Selección y dosificación del anticoagulante.
1.1 Selección de anticoagulante: Es recomendable elegir heparina como anticoagulante.El oxalato o el citrato de sodio pueden provocar una fina contracción celular que afecta la agregación y la deformabilidad de los glóbulos rojos, lo que provoca un aumento de la viscosidad de la sangre, por lo que no es adecuado para su uso.
1.1.2 Dosis de anticoagulante: la concentración de anticoagulante de heparina es de 10 a 20 UI/ml de sangre, se utiliza fase sólida o fase líquida de alta concentración como agente anticoagulante.Si se utiliza anticoagulante líquido directamente, se debe considerar su efecto de dilución en la sangre.El mismo lote de ensayos debería
Utilice el mismo anticoagulante con el mismo número de lote.
1.3 Producción del tubo de anticoagulante: si se utiliza anticoagulante en fase líquida, se debe colocar en un tubo de vidrio seco o en una botella de vidrio y secar en un horno. Después del secado, la temperatura de secado debe controlarse a no más de 56 °C.
Nota: La cantidad de anticoagulante no debe ser demasiado grande para minimizar el efecto de dilución en la sangre;la cantidad de anticoagulante no debe ser demasiado pequeña, de lo contrario no alcanzará ningún efecto anticoagulante.
2. Recogida de muestras
2.1 Hora: Generalmente, la sangre debe recolectarse temprano en la mañana, con el estómago vacío y en un estado tranquilo.
2.2 Ubicación: Al extraer sangre, siéntese y extraiga sangre de la parte anterior venosa del codo.
2.3 Acorte el tiempo de bloqueo venoso tanto como sea posible durante la extracción de sangre.Después de perforar la aguja en el vaso sanguíneo, afloje inmediatamente el manguito para que quede quieto. Aproximadamente 5 segundos para comenzar la extracción de sangre.
2.4 El proceso de extracción de sangre no debe ser demasiado rápido y se debe evitar el posible daño a los glóbulos rojos causado por la fuerza de corte.Para ello, es mejor utilizar una lanceta con un diámetro interior de la punta (es mejor utilizar una aguja de calibre superior a 7).No es aconsejable aplicar demasiada fuerza durante la extracción de sangre para evitar una fuerza de corte anormal cuando la sangre fluye a través de la aguja.
2.2.5 Mezcla de la muestra: después de recolectar la sangre, desenrosque la aguja de inyección e inyecte lentamente la sangre en el tubo de ensayo a lo largo de la pared del tubo de ensayo, y luego sostenga la mitad del tubo de ensayo con la mano y frótela o deslícelo con un movimiento circular sobre la mesa para que la sangre se mezcle completamente con el anticoagulante.
Para evitar la coagulación de la sangre, pero evite agitar vigorosamente para evitar la hemólisis.
3.Preparación del plasma
La preparación del plasma adopta métodos clínicos de rutina, la fuerza centrífuga es de aproximadamente 2300 × g durante 30 minutos y la capa superior de sangre se extrae como pulpa para medir la viscosidad del plasma.
4. Colocación de la muestra
4.1 Temperatura de almacenamiento: las muestras no se pueden almacenar por debajo de 0°C.En condiciones de congelación, afectará el estado fisiológico de la sangre.
Estado y propiedades reológicas.Por lo tanto, las muestras de sangre generalmente se almacenan a temperatura ambiente (15°C-25°C).
4.2 Tiempo de colocación: la muestra generalmente se analiza dentro de las 4 horas a temperatura ambiente, pero si la sangre se extrae inmediatamente, es decir, si se realiza la prueba, el resultado de la prueba es bajo.Por tanto, es conveniente dejar reposar la prueba durante 20 minutos después de la extracción de sangre.
4.3 Las muestras no se pueden congelar ni almacenar por debajo de 0 °C.Cuando las muestras de sangre deban almacenarse durante un período de tiempo más largo en circunstancias especiales, deben marcarse como Poner en el refrigerador a 4 ℃ y el tiempo de almacenamiento generalmente no es más de 12 horas.Almacene las muestras adecuadamente antes de realizar la prueba, agítelas bien y las condiciones de almacenamiento deben indicarse en el informe de resultados.